Стерилизация хирургических инструментов в ветеринарии. Методы стерилизации хирургических инструментов

Способы обработки изделий медицинского назначения строго регламентированы методическими указаниями, которые утверждаются руководителем Департамента госсанэпиднадзора Министерства здравоохранения России.

Обработку инструментов и материалов проводят с целью профилактики внутрибольничных инфекций у персонала и пациентов. Различают два вида обработки: дезинфекция и стерилизация.

Дезинфекция медицинских изделий

Дезинфекция обеспечивает уничтожение патогенных и условно-патогенных возбудителей - бактерий, вирусов, грибов на поверхности самих изделий, а также в их полостях и каналах. Дезинфекция не обеспечивает уничтожение споровых форм. Дезинфекции подвергают абсолютно все изделия, соприкасающиеся с пациентом. После этого вида очистки инструменты либо используют по назначению, либо подвергают дальнейшей стерилизации.

Дезинфекция осуществляется физическими или химическими методами очистки. Выбор метода зависит от назначения и особенностей изделия.

Более предпочтительным является физический так как он экологически чист, надежен и безопасен для персонала. К физическим (термическим) методам дезинфекции относятся:

• кипячение медицинских инструментов в дистиллированной воде или с добавлением карбоната натрия;
• паровой (в автоклаве);
• воздушный (сухожаровой стерилизатор).

Для физической дезинфекции используют те же приборы, что и для стерилизации, но в более мягких режимах работы.

Химическую дезинфекцию проводят полным погружением инструментов в специальный раствор. Для дезинфекции разрешено использовать только следующие группы соединений: катионные ПАВ, окислители, хлорсодержащие средства, средства на основе спиртов, перекиси водорода, альдегидов. Указания Минздрава строго регламентируют применение дезинфицирующих веществ: их перечень, концентрацию раствора и время выдержки, вид уничтожаемой инфекции и вид очищаемых изделий. После дезинфекции изделия необходимо промыть проточной питьевой водой, а остатки загрязнений отмыть механическими средствами (щетками, ершами, салфетками).

Предстерилизационная очистка

Этот вид очистки используют после дезинфекции изделий и их последующей отмывки проточной питьевой водой. Цель предстерилизационной обработки - удаление с изделий механических, белковых и жировых загрязнений, остатков лекарственных средств.

Для очистки инструментов и материалов перед стерилизацией применяют строго регламентированные Минздравом растворы химических средств с указанием их концентрации, температуры и времени выдержки, способа очистки и вида очищаемых изделий. Если выбранный раствор обладает не только моющим, но и дезинфицирующим свойством, то предстерилизационная очистка вполне может быть совмещена с дезинфекцией.

Стерилизация

Стерилизация проводится с целью физического уничтожения всех непатогенных и патогенных микроорганизмов на них, в том числе и спор.

Стерилизации подвергают все инструменты и материалы, которые соприкасались с раневой поверхностью, контактировали с кровью пациента или кровью, вводимой в него, а также с инъекционными препаратами; контактировали со слизистыми оболочками или же способные повредить слизистые оболочки.

Для этого используют химические и физические (термические) методы стерилизации. Выбирают метод в зависимости от свойств стерилизуемых изделий.

Физические (термические) методы стерилизации

Данные осуществляются с помощью:

• пара в автоклавах (паровой метод);
• горячего воздуха в сухожаровых шкафах (воздушный метод);
• стеклянных шариков;
• микроволн в условиях частичного вакуума.

Стерилизация в паровом стерилизаторе

При этом методе очистки инструментов в качестве стерилизующего средства используют насыщенный водяной пар под давлением 0,05-0,21 МПа с температурой пара 110-135° С. Очистку проводят в специальных медицинских автоклавах для стерилизации. Принцип действия прибора: при повышении давления температура кипения воды возрастает. Если при нормальном давлении вода закипает при 100° С, то при повышении давления всего на 1 атм, уже при 120° С. В таких условиях микроорганизмы погибают в течение 30 мин. Если повысить давление на 2 атм, вода закипит при температуре 134° С, микробы погибнут через 15 минут.

Очищение инструментов в автоклаве осуществляется в три этапа:

В каких случаях для стерилизации используют автоклав?

Применяют автоклав для стерилизации:

• Маникюрных инструментов.
• Специальных и общехирургических инструментов.
• Стекол.
• Деталей приборов из коррозионноустойчивых материалов.
• Медицинского белья, перевязочного и шовного материала.
• Резиновых изделий (перчаток, зондов, катетеров, трубок).
• Стеклянных шприцов.

Изделия стеклянные, текстильные, из коррозионностойких материалов, лигатурный шовный материал обрабатывают паром температурой 134-126 °С под давлением 0,21-0,14 МПа. Резиновые изделия очищают при температуре 120-122 °С. Изделия из пластмасс (полиэтилен, ПВХ) стерилизуют при более мягких условиях: давлении 0,11-0,05 МПа и температуре 121-110 °С.

Резиновые перчатки необходимо пересыпать тальком внутри и снаружи для предотвращения их склеивания. Между перчатками нужно проложить бумагу или марлю. Кроме того, каждую пару перчаток следует завернуть отдельно.

Очищение в автоклаве изделий проводят в биксах - стерилизационных коробках. Кроме того, все изделия должны быть дополнительно упакованы в:

• двойную мягкую упаковку;
• пергамент;
• бумагу мешочную непропитанную;
• бумагу мешочную жаропрочную;
• бумагу крепированную;
• бумагу упаковочную высокопрочную.

Если для стерилизации использовали без фильтра или двойную мягкую упаковку, изделия считаются чистыми в течение 3 суток, если пергамент, бумагу мешочную непропитанную, бумагу мешочную жаропрочную, бумагу крепированную, бумагу упаковочную высокопрочную или стерилизационную коробку с фильтром - 20 суток.

Сухожар

Сухожаровая стерилизация применяется для изделий, которые не могут подвергаться воздействию влажного пара или газа. В качестве стерилизующего средства используется горячий воздух, циркулирующий внутри прибора. Режим стерилизации в воздушном стерилизаторе: температура от 160 до 200 °С, время выдержки от 30 до 150 минут. Чем выше температура воздуха, тем меньшее потребуется время выдержки. При температуре 200 °С изделия обрабатывают в течение 30 минут, 180 °С - от 45 до 60 минут, 160 °С - 150 минут. Выбор режима стерилизации в воздушном стерилизаторе зависит от особенностей изделия. Время нужно отсчитывать с момента достижения внутри камеры температуры воздуха 180°С, а не с момента включения шкафа. Сухожаровой шкаф для стерилизации медицинских инструментов оснащен индикатором температуры, таймером и термостатом.

Сухой воздух высокой температуры убивает вегетативные формы микроорганизмов, а также все споры. Однако широта применения этого термического метода стерилизации весьма ограничена. Причиной является высокая продолжительность процесса очистки и нестойкость многих материалов к таким высоким температурам (200 °С).

В каких случаях для стерилизации используют сухожаровой шкаф?

Используют сухожаровой шкаф для стерилизации:

• Медицинских инструментов из силиконовой резины.
• Хирургических инструментов.
• Гинекологических инструментов.
• Стоматологических инструментов.
• Стеклянных шприцов.
• Инъекционных игл.
• Деталей приборов, изготовленных из материалов нестойких к коррозии.

В сухожаровом шкафу для стерилизации можно использовать следующие виды упаковок:

• Бумагу мешочную влагопрочную.
• Бумагу крепированную.
• Бумагу упаковочную высокопрочную.

Можно также проводить стерилизацию в открытых лотках без упаковки.

Правила стерилизации

Проводя стерилизацию в сухожаровых шкафах, изделия заворачивают в один-два слоя упаковки или кладут в лотки. После загрузки очищаемого материала включают прибор. После того, как воздух в шкафу прогреется до 90 °С, дверцы закрывают. Осуществляют непосредственно стерилизацию. По истечении положенного времени прибор выключают, и ждут снижения температуры воздуха до 90 °С. Только тогда можно будет открыть дверцы и забрать чистые инструменты и материалы. Таким образом, весь процесс длится не менее двух часов.

Изделия, обработанные воздухом в упаковке, сохраняются стерилизованными 20 суток. Изделия, очищенные воздухом без упаковки, нужно поместить на «стерильный стол» и использовать в течение рабочей смены.

В сухожаровой шкаф для стерилизации нужно помещать только сухие изделия, поэтому их высушивают после предстерилизационной подготовки в сушильных шкафах при температуре 85 °С.

Стерилизация будет качественной, только если горячий воздух в камере распределяется равномерно, для этого необходимо правильно загружать прибор. Изделия нужно уложить горизонтально, поперек пазов полок или кассет. Если инструменты обрабатываются без упаковки, то они не должны касаться друг друга. Нельзя загромождать камеру, необходимо так разместить инструменты, чтобы воздух свободно подавался к каждому из них. Нужно проследить, чтобы решетки вентиляции и продувочные окна не были перекрыты. Чтобы объемные изделия не мешали потоку воздуха, их нужно размещать на верхней металлической решетке. Загружать и вынимать изделия можно, когда температура воздуха в камере опускается до 50-40 °С.

Стерилизация с помощью стеклянных шариков

Очищающим средством являются нагретые стеклянные (гласперленовые) шарики. Этим методом стерилизуют стоматологический инвентарь (алмазные головки, боры, дрильборы). Обработка продолжается 15-180 секунд.

Химическая стерилизация

Этот метод очистки используется только в том случае, если термические методы стерилизации данного изделия невозможны. Химической обработке подвергают инструменты и материалы из термолабильного материала с условием хорошего доступа стерилизующего средства ко всем полостям и поверхностям предмета. Применение данного метода очистки ограничено, так как инструменты невозможно простерилизовать в упаковке, а значит нельзя их хранить после обработки. Кроме того, после стерилизации химическими средствами инструменты необходимо промыть, что чревато вторичным обсеменением.

Особенности обработки изделий, применяемых для оказания парикмахерских и косметических услуг

Любая процедура, которая может привести к травме кожи или слизистых оболочек, должна проводиться стерильными инструментами. Если для этих процедур изделие используется многократно, то оно должно подвергаться дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации. В современных парикмахерских и косметологических салонах обычно используют химическую дезинфекцию, совмещенную с предстерилизационной очисткой, гораздо реже используется сухожаровый шкаф или автоклав для стерилизации маникюрных инструментов. Преимуществом сухожаровых шкафов является уничтожение споровых форм, демократичная цена и большой объем камеры, что позволяет стерилизовать сразу много инструментария. Недостатками является огромное потребление энергии и порча инструментов под действием слишком высоких температур.

После стерилизации чистые изделия можно хранить в УФО-стерилизаторе 3 суток или в лотках с герметично закрывающимися крышками.

Контроль стерилизации

В систему контроля стерилизации входит:

• Проверка параметров режима стерилизации. Для этого применяют физические (использование контрольно-измерительных приборов) и химические (использование индикаторов) методы. Температурный режим проверяют с помощью термометров, которые помещают в регламентированные точки приборов стерилизации. С помощью химических индикаторов можно точно определить время и температуру обработки.
• Оценка эффективности обработки. Для этого используются бактериологические исследования - биотесты. Определенное количество спор помещают в инсулиновые флаконы (паровые и воздушные стерилизаторы) или на диски фильтровальной бумаги (воздушные стерилизаторы).

Стерилизация признается эффективной в случае отсутствия роста посеянной тест-культуры в сочетании с положительными результатами проверки режима стерилизации.

Стерилизация хирургических инструментов

хирургический автоклавирование антисептический

Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды - стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов - 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа. Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180 - 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты - 3 части, едкого натра - 15 частей, формалина - 20 частей, дистиллированной воды - 1000 частей; формалина - 20 частей, фенола чистого жидкого - 1,5 части, карбоната натрия - 7,5 части, воды дистиллированной - 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45-50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация - суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами - в отдельной упаковке).

Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6-8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) - 100 г., нашатырного спирта - 50 мл, воды - 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части - контрольные стекла и капельницы - промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно - проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30-40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, так как они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

Стерилизация анестезиологических принадлежностей - интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок - осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида, водно-спиртовой раствор левомицетина 1:1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5-2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15-30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части - переходные трубки, щипцы, зубные распорки - стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1: 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением.

Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30-40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов - производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке. Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде - 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150-160° - 1 час. Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.

Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12-24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1: 1000.

Часто применяют модификации способа Кохера.

• 1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
• 2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№0-4 в течение 15 мин., №5-8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
• 3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в том числе и в сулеме.

Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.

Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала - кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12-24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№0-1 на 30 сек., №2-5 на 1 мин., №6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6-7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке - 40 г., в 5-литровой банке - 60 г.). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным №0-1 - через 3 суток, №2-4 - через 4 суток, №5-6 - через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г. чистого йода и 10 г. калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.

Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г. йода и 10 г. калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7-10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г. калия йодида и 10 г. чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8-10 суток после выдерживания его в течение 12-24 час. в эфире, а затем на 4- 6 суток - в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7-10 суток.

ü 1 этап. Дезинфекция.

Цель: Обезопасить себя от заражения инфекциями, передающимися через кровь.

Ø Инструментарий в разобранном виде помещают в накопитель с водой, где он должен находиться до момента дезинфекции.

Ø Дезинфекция проводится в другой ёмкости либо физическим методом (кипячение в дистиллированной воде 30 мин.), либо химическим (помещают в 3% хлорамин ан 30 мин. или в 4% Н 2 О 2 на 20 мин.).

Ø Промывают инструментарий проточной водой до исчезновения запаха дезинфицирующего средства.

Ø Обеззараживают накопитель (кипячение 30 мин. или засыпать на 60 мин сухой хлористой известью 200,0 на 1 л.).

ü 2 этап. Предстерилизационная очистка (ПСО).

Цель: Удаление с инструментария белковых, жировых и механических загрязнений, остатков ЛП.

Ø Погрузить инструментарий в тёплый моющий комплекс (40-50 0 С в зависимости от моющего средства) на 15 мин.

Ø Промыть щёткой, ватно-марлевым тампоном или ёршиком каждый инструмент в моющем комплексе 0,5 мин.

Ø Ополоснуть проточной водой 3-10 мин.

Ø Ополоснуть каждый инструмент дистиллированной водой 0,5 мин.

Ø Высушить горячим воздухом при t 0 80-85 0 С до полного исчезновения влаги.

Ø Провести контроль качества ПСО (см. ОСД).

ü 3 этап. Стерилизация.

Цель: Уничтожение споровых форм микробов.

Сухожаровой метод:

Ø Инструментарий разложен равно на подносе.

Ø Выдерживают 60 мин. при 180 0 С.

Ø Использовать в течение рабочей смены.

Автоклавирование:

Ø Упаковать инструментарий в х/б ткань или крепированную бумагу.

Ø Выдержать 20 мин. при 2 атм.

Химический метод:

Ø Погрузить в 1 из растворов:

v 6% Н 2 О 2 на 180 мин. при 50 0 С.

v 1% дезоксон-1 на 45 мин. при 20 0 С.

Ø Промыть в 2 стерильных ёмкостях водой по 5 мин. в каждой.

Ø Завернуть в стерильную простыню и хранить в стерильном биксе.

Ø Использовать в течение 3 сут.

Оценка результата:

Обработка операционного поля (ОП):

Последовательность действий: Подготовка ОП состоит из санитарно-гигиенической обработки кожи до операции и специальной обработки на операционном столе.

ü К плановой операции:

Ø Накануне операции провести полную санитарно-гигиеническую подготовку кожи (ванная, душ, частичная санитарная обработка с учётом состояния пациента).

Ø Смена постельного и нательного белья.

Ø В день операции обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать этиловым спиртом.

ü К экстренной операции:

Ø Провести частичную санитарную обработку кожи.

Ø Обработать кожу антисептиком, высушить, провести сухое бритьё по ходу роста волос, обработать спиртом.

ü На операционном столе:

Ø Широко обработать ОП двукратно от центра к периферии.

Ø Обработать ОП в месте разреза кожи.

Ø Ограничить ОП стерильным бельём.

Ø Повторить обработку ОП в месте разреза кожи.

Ø Обработать ОП перед наложением швов.

Ø Обработать ОП после наложения швов.

ü По ОСТу 42-21-2-85: 1% стодонат, 1% стодинол, 1% стодпирон, 0,5% хлоргексидинбиглюконат, АХД, АХД-2000, АХД-специаль, лизанин-ОП-Ред.

Ø Примечания:

v Если операция проводится под местным обезболиванием, то после анестезии обязательно дополнительно обработать кожу антисептиком.

v Для обработки ОП использовать окрашивающие кожу антисептики, они помогают отличить обработанные участки поля от необработанных.

v Для изоляции кожи ОП можно применить специальную стерильную пелёнку (протектор) Эмакрил.

Оценка результата: можно проверить только бактериологическим путём.

Контроль стерилизации.

ü Прямой метод:

Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с. Этот метод используется для контроля СЭР в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).

ü Непрямой метод:

Ø С помощью индикаторов. Меняют цвет. При закладке светлые – 120 0 С слегка песочного цвета – 132 0 С светло-коричневые – 180 0 С тёмно-коричневые (почти чёрные).

Ø С помощью химических веществ. Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt 0 вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота при 120 0 С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевина при 132 0 С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота при 180 0 С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt 0 плавления.

Ø С помощью термо-временных индикаторов. Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120 – в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132 – в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180 – сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).

Надевание стерильного халата:

ü На себя. М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.

ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. - Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.

Надевание стерильных печаток:

ü На себя. М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.

Если пальцы попадают не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.

Перчатки снимать так , чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.

ü На врача. М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.

Виды перчаток:

ü Синтетические. - Латексные.

ü Опудренные. - Неопудренные.

ü Диагностические. - Хирургические.

ü Стерильные. - Нестерильные.

Все перчатки д.б. прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.

Средства для дезинфекции и стерилизации:

ü Лизоформин–3000. Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции 1,5, 0,75, 2%, для стерилизации 8%.

ü Бланизол. Для ПСО ИМН, эндоскопов 1% раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.

ü Дезоформ. Для дезинфекции ИМН из любого материала 1, 3, 5%.

ü Лизанол. Кожный антисептик .

ü Хлорапин. Обработка всего. В таблетках и гранулах.

ü Амидин. Кожный антисептик . Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.

Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:

Оснащение: Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.

Алгоритм:

ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой в направлении от себя .

ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.

ü Достать щипцами 1 простыню . Развернуть в 1 слой . Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола , но не касалась пола.

ü 2 простынь в 2 слоя . Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см .

ü 3 простынь в 2 слоя . Так, чтобы свисала с края стола на 10 см .

ü 4 простынь так же как 3 .

ü 5 простынь в 1 слой . Так, чтобы перекрыла край 2 простыни .

ü Корнцанги наложить на края 5 простыни на уровне углов стола.

ü Поднимаем простынь за корнцанги и складываем гармошкой на дальнем конце стола в направлении от себя к себе . Последнее направление на себя.Кладём корнцанги кольцами друг к другу.

ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3 . Складываем гармошкой поверх корнцангов. Цапки кладём кольцами друг к другу .

ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки и перекрываем . Берём корнцанги иперекрываем .

С функциональ­ной точки зрения хирургические инструменты подразделяют на обычные ме­таллические, режущие, пластмассовые и резиновые, а также оптические. Ос­новным регламентирующим документом по обработке медицинского инсрументария является: «Отраслевой стандарт. Стерилизации и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы ("I 42-21 - 2-85. Приказ М3 СССР от 10.06.85.). С учётом неблагоприятной эпидситуации по СПИДу ОСТ дополнен приказом ГУЗО и ЦГСЭН № 222/80 от 27.06.00. СанПиН 2.1.3.2630-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность" СанПиН 3.1.5.2826-10 «Профилактика ВИЧ-инфекции.

Согласно этим документам предполагаются следующие последова­тельные этапы обработки изделий медицинского назначения: дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация.

Дезинфекция проводится для того, чтобы обезопасить медицинский персонал от инфицирования при обработке инструментов после операции. Физические методы дезинфекции (кипячение, паровой и воздушный) в усло­виях стационара практически не применяют из-за громоздкости, недостаточ­ной эффективности или из-за быстрого износа инструментов. В качестве хи­мических методов применяют следующие средства: а) 3% раствор хлорамина - 60 мин; б) 6% раствор перекиси водорода - 60 мин; в) 6% раствор переки­си водорода + 0,5% раствор моющего средства - 60 мин; г) 4% раствор фор­малина (по формальдегиду) - 60 мин; д) 4% раствор перекиси водорода - 90 мин; е) препарат «Сайдекс» - 15 мин. Все инструменты заливают одним из этих растворов до полного их погружения. После дезинфекции их промыва­ют проточной водой.

Предстерилизационная очистка проводится для удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. При предстерилизационной очистке выполняют последовательно следующие действия: а)замачивание на 15 мин в моющем растворе, в состав которого входят перекись водорода 3% - 156 мл, моющее средство - 5 г и вода до объ­ёма - 1 л; б) индивидуальное мытьё каждого изделия в моющем комплексе в течение 30 сек; в) промывание проточной водой после использования мою­щих средств - не менее 3 мин; г) ополаскивание дистиллированной водой для смывания солей; д) высушивание инструментария до полного исчезно­вения влаги.

Собственно стерилизация. Применявшееся ранее кипячение сохраняет своё значение только для дезинфекции или стерилизации инструментов ин­дивидуального пользования. Бели предыдущие этапы проводят при стерили­зации любых инструментов независимо от их вида, то при непосредственной стерилизации дифференцированно используют различные методы в зависи­мости от вида стерилизуемого инструмента.

Обычные металлические инструменты стерилизуются в сухожаровом шкафу или в паровом стерилизаторе (автоклаве).

Стерилизация инструментов в сухожаровом шкафу производится горя­чим воздухом в течение 1 часа при температуре 180 С без их упаковки (от­крытый способ). Для контроля качества стерилизации в сухожаровом шкафу применяют следующие тест-индикаторы: гидрохинон (индикатор приобрета­ет чёрный цвет) и тиомочевину (жёлтый цвет индикатора превращается в оранжевый).

Стерилизация в паровом стерилизаторе происходит в результате воз­действия водяного пара. Он представляет собой две металлические камеры, вложенные одна в другую и герметично закрытые фронтальной крышкой. Пар из парообразователя попадает в наружную камеру, из неё во внутрен­нюю и затем в конденсатор. Если перекрывают выводной вентиль го внут­ренней камеры, то давление пара во внутренней камере начинает расти (мак­симально - до 2 атм.). Параллельно повышается температура пара до 132°С при 2 атм. Обычные металлические хирургические инструменты стерилизу­ют под давлением 2 атм. в течение 20 мин. Современные паровые стерили­заторы должны быть проходного типа, то есть иметь две фронтальные крыш­ки на противоположных сторонах аппарата, причём располагаться эти крыш­ки должны в разных помещениях для полной изоляции стерильного и несте­рильного материала. Кроме того, паровые стерилизаторы должны быть ос­нащены генераторами, создающими пульсирующий вакуум для удаления из стерилизатора воздуха, который является теплоизолятором и препятствует эффективной стерилизации. Стерилизуемые в паровом стерилизаторе инструменты помещают в биксы Шимельбуша или биксы со специальным бактериальным фильтром, а также в специальные пакеты для стерилизации. Стерильные инструменты из закрытого бикса Шимельбуша могут быть использованы в течение 3 суток, из закрытого бикса, оснащённого фильтром, - в течение 20 суток. После открытия биксов или пакетов содержимое их должно быть использовано в течение 1 суток при условии соблюдения всех правил асептики.

Пакеты для стерилизации бывают нескольких видов: а) бумага креппированная, которая заворачивается в виде конверта (при отсутствии нарушений целостности упаковки она сохраняет состояние стерильности содержимого 3 суток); б) бумажная упаковка с полоской термоклея и индикатором стерилизации [ класса (невскрытая упаковка сохраняет стерильность содержимого 60 суток); в) упаковка комбинированная, у которой одна сторона сделана из ламинированной бумаги, а другая - из полиэтиленовой плёнки, имеет полоску термоклея и индикатор стерилизации I класса (невскрытая упаковка сохраняет стерильность содержимого 1 год). Упаковочные пакеты для стерилизации производят европейские фирмы Rexam (Англия), SPS - lab. (Франция), Steriking (Финляндия) и др. Стерилизацию открытым способом в паровом стерилизаторе проводить не следует!

Существуют химические (холодные) методы стерилизации инструмен-тов: 6 % раствором перекиси водорода при температуре 18°С в течение 6 часов, параформом или 16 “/сводным раствором формальдегида в герметичных камерах в течение 48 часов, 0,5 % водно-спиртовом раствором хлоргексидина в течение 5 мин., стерилизация в специальных камерах оксидом этилена РО), а также радиационная стерилизация.

Режущие металлические инструменты (скальпели, хирургические иглы, ножницы и др.) стерилизуют холодными методами, чтобы они не тупились под воздействием горячего пара. Наиболее часто применяют для этой цели перекись водорода или спиртовой раствор хлоргексидина. Ножницы допус­тимо стерилизовать в сухожаровом шкафу. Оптимальным является промыш­ленная лучевая или этиленоксидная стерилизация скальпелей и атравматического шовного материала однократного применения.

Пластмассовые, резиновые и оптические инструменты. Стерилизация резиновых и пластмассовых изделий возможна термическим методом в паро­вом стерилизаторе под давлением 1,1 атм. в течение 45 мин. В настоящее время используют перчатки однократного применения, стерилизованные промышленным лучевым методом, однако в экстремальных условиях стери­лизовать резиновые перчатки можно автоклавированием. Для химического метода стерилизации используют пары формалина, этанол, этиленоксид и др.

Помимо газовой стерилизации оптических приборов (эндоскопы) при­меняют 0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина, первомур или сайдекс.

1.2.2. Стерилизация перевязочного материала и операционного бе­лья. К перевязочному материалу и белью относят большие и малые марлевые салфетки, марлевые тампоны, другие специальные марлевые и ватные изде­лия, а также простыни, пелёнки и халаты. Набор материала для автоклавиро- вания называется укладкой. Паровая стерилшация производится в биксах Шиммельбуша, металлических биксах с фильтрами, а также в х/б простынях или пелёнках. Биксы снабжены этикетками, на которых должна быть инфор­мация о содержимом бикса и принадлежности его к той или иной операцион­ной или перевязочной. Процесс подготовки перевязочного материала к опе­рации или перевязке подразделяют на 3 этапа.

I этап предстершизационная подготовка материала. Марлевое по­лотно нарезают на куски различной величины в зависимости оттого, что предстоит изготовить - малые салфетки, большие салфетки, тампоны и т.п. Марля должна быть мягкой и гигроскопичной. Перевязочный материал скла­дывают так, чтобы свободные края были заправлены внутрь салфеток или тампонов.

II этап - укладка и подготовка материала к стерилизации. Существу­ют 3 основных вида укладки биксов. Универсальная укладка обычно исполь­зуется при работе в перевязочных и для малых операций. Материал при этом укладывают в биксы секторами (в один сектор - малые салфетки, и другой - большие салфетки, в третий - тампоны и т. д.), чтобы не приходилось нару­шать стерильность при поиске того или иного вида материала. Целенаправ­ленная укладка включает всё необходимое для выполнения типичных мани­пуляций, процедур и малых операций (укладка для трахеостомии, для кате­теризации подключичной вены, для перидуральной анестезии и др.). В бикс укладывают все необходимые инструменты, перевязочный материал и бельё. Видовая укладка используется при работе в больших операционных блоках. При этом в бикс укладывают один вид перевязочного материала или белья (в один - халаты, в другой - простыни, в третий - салфетки и т.д.).

В настоящее время всё шире используется операционное бельё одно­кратного применения из нетканого материала (простыни, пелёнки халаты, шапочки и маски), а также упаковки с марлевыми салфетками промышлен­ной лучевой стерилизации.

III этап - стерилизация. Стерилизация белья проводится паровым ме­тодом под давлением 2 атм. при температуре 132°С в течение 20 мин. Перед загрузкой в автоклав проверяют, открыты ли отверстия в биксе. После стери­лизации отверстия в биксе в процессе извлечения его из автоклава закрывают металлической вращающейся лентой на корпусе бикса и отмечают на нём да­ту стерилизации.

ОБРАБОТКА РУК ХИРУРГА

Обработка (мытье) рук хирурга - очень важная процедура. Существуют определенные правила мытья рук. Последовательно нужно осуществить: механическую и химическую (обезжиривание) обработку, воздействие антисептических средств и дубление (закрытие пор для поддержания стерильности поверхности кожи).

Современные способы обработки рук не требуют специального дубления (используются пленкообразующие антисептики или антисептики с элементом дубления).

Механическая и химическая обработка

Механическая и химическая обработка проводятся посредством мытья рук под краном со щеткой и мылом. Руки тщательно моются от кончиков пальцев до верхней трети предплечья. При этом соблюдается определенная последовательность обработки, в основе которой лежит принцип «не касаться обработанными участками рук менее чистой кожи и предметов».

Применение современных способов допускает мытье рук просто с мы-лом или с помощью жидких моющих средств (при отсутствии бытового загрязнения рук).

Для выполнения оперативных вмешательств имеется большое количество разнообразных инструментов (скальпели, ножницы, иглы и иглодержатели, зажимы, крючки, ранорасширители, зонды, катетеры и др., включая сложную медицинскую аппаратуру). Инструменты, использованные во время операции, перевязок и других манипуляций, нуждаются в специальной предстерилизационной очистке для удаления белковых, жировых и других загрязнений, а также лекарственных препаратов. Особенно тщательно обработка проводится при загрязнении инструментов гноем, кишечным содержимым. Такие инструменты должны еще до предстерилизационной очистки дезинфицироваться химическими веществами: 6% перекисью водорода с 0,5% раствором синтетических моющих средств (экспозиция 30 минут), 0,1% надуксусной кислотой (экспозиция 15 минут), 2,4% раствором первомура (надмуравьиная кислота с перекисью водорода), тройным раствором (карболовая кислота 3 г, карбонат натрия 15 г, формалин 20 г, вода 1л) в течение 45 минут.

Предстерилизационная очистка слагается из 6 этапов: 1) ополаскивание теплой проточной водой в течение 1 минуты; 2) замачивание в течение 15 минут в теплом растворе, содержащем 1-2% перекиси водорода и 0,5% синтетических моющих средств, 3) обработка инструментов в моющем растворе в течение 1 минуты щеткой, ершом, тампоном, обращая внимание на труднодоступные места, моющий раствор меняют на чистый при появлении признаков загрязнения, крови; 4) ополаскивание проточной водой в течение 5 минут; 5) ополаскивание дистиллированной водой в течение 1 минуты; 6) сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 80-85°.
Таким образом, предстерилизационная очистка использованного инструмента занимает около 25 минут, не считая времени на просушку, поскольку, если инструменты стерилизуют сразу после очистки, то просушку производить нет надобности. Скальпели обрабатывают отдельно, чтобы не повредить лезвие. Качество обработки на присутствие даже следов крови проверяют с помощью бензидиновой пробы, основанной на окислении бензидина перекисью водорода. При наличии следов крови на инструментах или шприцах бесцветный реактив приобретает сине-зеленую окраску.

Стерилизовать хирургические инструменты лучше всего автоклавированием, разместив их на подносах, завернутых простыней, или упаковав в два мешка с завязками по типу кисета (минимальная экспозиция 40 минут при давлении 1,5 атмосферы). Можно стерилизовать в воздушных сухожаровых стерилизаторах в течение 60 минут, но инструменты нельзя заворачивать в материю, бумагу, так как они обуглятся или сгорят при температуре 170°, которая бывает в сухожаровых стерилизаторах. Поэтому инструменты раскладывают в металлических пеналах или коробках с открытыми крышками с тем, чтобы температура достигла нужных 170-180°. Для относительно быстрой и достаточно простой стерилизации инструментов используют стерилизаторы-кипятильники. Сетку с инструментами опускают в стерилизатор и кипятят в течение 25-30 минут в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия (соды) или просто в дистиллированной воде. Сода способствует разрушению спор микробов, жиров и белков, предотвращает коррозию металлов. Если инструменты не прошли предстерилизационной очистки, то кипячение проводится 2-3 раза по 45 минут со сменой воды или раствора соды. Полная стерилизация шприцев достигается через 45 минут (цилиндры и поршни обертывают марлей, в иглы вставляют мандрены во избежание закупорки их просвета). При возможном загрязнении шприцев гнилостной и анаэробной микрофлорой или вирусами гепатита (болезнь Боткина или инфекционная желтуха) необходимо 2-3-кратное кипячение в отдельном стерилизаторе.
Стерилизация сложной хирургической аппаратуры (оптические системы, детали наркозного аппарата и др.), изделий из резины и синтетических материалов возможна окисью этилена или смесью ее с бромистым метилом из расчета 1:2,5 в специальных газовых стерилизаторах. Применяют также стерилизацию в пароформалиновых камерах парами формалина: на дно плотно закрывающейся емкости кладут таблетки формалина или наливают 25-30 мл формалина(40% водный раствор формальдегида), в камеру подается пар. Возможна стерилизация путем обмывания в растворе окиси цианистой ртути (1:1000).
Хирургические инструменты можно обрабатывать путем холодной стерилизации, которая проводится с использованием производных фенола, формалина, дихлорида ртути, спиртов, красителей, галогенов и других химических веществ. Высокие концентрации указанных препаратов обладают не только бактерицидным, но и спороцидным действием. В частности, используется тройной раствор (экспозиция 45 минут, споры гибнут через 1,5 часа); ртутный препарат диоцид в растворе 1:1000 и 1:5000 (экспозиция 45 минут); 1% раствор бриллиантового зеленого (споры гибнут через 30 минут); генциан фиолетовый в количестве 1 г и 2 г формальдегида, растворенные в 100 мл 96% этилового спирта (споры уничтожаются через 2-4 часа); 2,5% раствор гобитона, где действующим началом является 20% глюконат хлоргексидина (экспозиция 30 минут). После применения любого из указанных способов холодной стерилизации инструменты погружают в 70% или 96% этиловый спирт для длительного хранения в стерильном состоянии. Для стерилизации оптических систем, синтетических и пластмассовых изделий применяют оксицианид ртути (1:1000), препарат не повреждает линзы и не растворяет клей (экспозиция 20 минут). Режущие и колющие инструменты (скальпели, иглы) стерилизуют погружением на 2 часа в 96% этиловый спирт или тройной раствор.
В исключительных случаях без предстерилизационной обработки инструментарий, загрязненный гноем, стерилизуют лизолом (фенольный препарат), 35% раствором зеленого калийного мыла, 5% раствором хлорамина Б, 1% раствором сульфохлорактина, 0,5% раствором хлорцина.
Как крайнюю меру в исключительных случаях для стерилизации применяют обжигание инструментария, предварительно залитого 96% этиловым спиртом, а также прокаливание на пламени. Но эти способы ненадежны при сложной конфигурации инструментов, их большого размера или объема.